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海马神经元培养

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梅梅竹 发表于 2009-11-14 16:36:38 | 显示全部楼层 |阅读模式
求助各位战友,我做原代培养的海马神经元,开始的几次培养都挺好的,国庆节以后,有两次96孔板中的细胞养得不错,爬片上的细胞几乎都脱片了,后面重新包被玻片,再次原代培养的时候,96孔板中的细胞长得不好了,爬片上的细胞长好了,最近这三次培养,96孔板和爬片上的细胞都不好,培养的第一天细胞状态还可以,数量也挺多的,不过第一天可能杂细胞要多一些,第二天,和以往培养的神经元相比,神经元数目少,神经胶质细胞较多,加了阿糖胞苷以后,胶质细胞明显减少,神经元也变得更少了,崩解明显,我的操作是一样的,培养的方法也没变,多聚赖氨酸都没用回收的,但是细胞就不好了,真不知道原因了。我把我的方法大致说一下,请战友们帮忙分析一下,谢谢!
1.我是用96孔板和48孔板(爬片)培养神经元的,用分子量7~15万的多聚赖氨酸包被培养板和玻片,终浓度是0.025mg/ml,包被过夜后,第二天吸出多聚赖氨酸,把板子晾干。
2.用新生1天的SD大鼠取海马组织,用0.125%胰酶消化30分钟,含10%FBS的DMEM/F12终止消化,吹打至米糊状后,200目筛网过筛,1000转/分离心5分钟,弃上清,用10%FBS的DMEM/F12吹悬细胞,血球计数板计数后调整细胞密度后培养。
3.第二天换Neurobasal+B27+Gln培养,第三天加阿糖胞苷(终浓度10μmol/L),培养三天后半定量换液。
再次感谢各位战友!
thinker 发表于 2009-11-15 14:12:47 | 显示全部楼层
1. 查下有没有换过什么试剂
2. 如果胶质不多,不一定要加阿糖胞苷
3. 玻片有没有处理干净
 楼主| 梅梅竹 发表于 2009-11-17 09:34:23 | 显示全部楼层
回复 2# thinker

    谢谢战友的指导!
    我们在同一批细胞中,无血清培养基试过两种,做MTT检测发现差别不大。玻片是泡酸过夜后冲洗20遍,过蒸馏水3遍后高温高压消毒的,用前用多聚赖氨酸包被了的。所以不知道原因是什么细胞老长不好!
thinker 发表于 2009-11-17 15:25:02 | 显示全部楼层
放显微镜下看,有没有污染,有时候能看到些小的细菌或焦虫。
还有海马裂解的时候吹打仔细些,不要太猛烈。
 楼主| 梅梅竹 发表于 2009-11-18 20:44:23 | 显示全部楼层
神经元的生长一日不如一日,一次不如一次啊,我前天原代培养的海马神经元,用加了Gln的10%FBS的DMEM/D12种的,种下了第二天(昨天)细胞挺好的,就是胶质细胞有点多,神经元的数量和状态都不错,昨天给细胞换了Neurobasal+B27+Gln培养基后,神经元数量减少,开始聚集成团,状态也不好了,感觉再聚下去就要崩解了,今天还给细胞加了阿糖胞苷的,不知道怎么回事细胞越养越差,请高手们给点指导啊!谢谢!
 楼主| 梅梅竹 发表于 2009-11-18 20:45:26 | 显示全部楼层
回复 4# thinker


    谢谢您,好像没有污染。
thinker 发表于 2009-11-19 15:06:27 | 显示全部楼层
把这些Neurobasal+B27+Gln培养液全部重新换一个新的批号。阿糖胞苷也不要加。
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